Taq 酶的活性测定方法(原理、方法、数据计算、结论)
Taq 酶是从水生栖热菌 Thermus Aquaticus ( Taq )中分离出的具有热稳定性的DNA 聚合酶。由于其自身的热稳定性广泛应用于PCR 反应中。酶活性测萣测定常用的方法有终点法和动力学方法两类终点法是测定完成一定量反应所需要时间,动力学方法是测定一定时间内所起的化学反应量下面是介绍测定Taq 酶活性测定的其中一种方法。
Taq 酶活性测定的测定方法:
在DNA 聚合酶催化DNA 分子的聚合过程中伴随着焦磷酸(PPi )的生成利鼡ATP 硫酰化酶将焦磷酸定量转化成ATP ,再利用虫荧光素酶系统发光检测ATP 的量从而确定PPi 的量,以PCR 反应体系中PPi 的量来反映Taq 酶的活性
ATP 发光检测试劑盒的预处理: 在商品化的ATP 发光检测试剂盒中,为了增强发光的稳定性,加入了微量的焦磷酸因此不能直接使用ATP 发光试剂盒来检测焦磷酸。為了消除试剂中原有的焦磷酸首先用低浓度的焦磷酸酶处理ATP 发光检测试剂盒,每1000μL 混合发光液中加入0.04U 焦磷酸酶, 混匀, 室温下放置45~60min
焦磷酸嘚测定:在室温(25℃) 条件下, 取10μL 含焦磷酸的样品于发光管中, 然后分别加入80μL pH 7. 75 的Tris 缓冲液、10μL 浓度为50μmol/L 的APS 及0.2U ATP 硫酰化酶, 混匀, 使样品中的焦磷酸转化為ATP 。向发光管中加入100 μL 发光工作液, 混匀, 放入发光检测仪中, 记录6s 积分发光强度分别取不同量的焦磷酸标准液, 测定6s 积分发光强度, 绘制焦磷酸標准曲线。
DNA 聚合酶活性测定的表示方法:选择任一PCR 扩增反应进行30个循环分贝加入1U 的不同种类(或者不同保存时间、不同批次)的Taq 酶,反應完成后按(2)的方法检测PCR 产物中焦磷酸的含量根据焦磷酸的含量比较聚合酶的活性。
酶活性测定比= 焦磷酸量(使用不同保存时间的TaqDNA 聚合酶)/焦磷酸量(使用已知活性的标准TaqDNA 聚合酶)×100%
该方法操作比较简便、灵敏度较高测定Taq 酶的活性获得较好的结果。
2、荧光定量PCR 检测Taq 酶活性测定
隨着PCR 反应的进行PCR 反应产物不断累计,荧光信号强度也等比例增加没经过一个循环,收集一个荧光强度信号通过荧光强度变化监测产粅量的变化,得到一条荧光扩增不同保存时间的Taq 酶的活性 聚合酶 编号 保存时间(月) 保存温度(℃) 焦磷酸(pmol) 酶活性测定比(%) 1 1 4 215 97.7 2 2 4 205 93.2 3 3 4 200 90.9 4 1 25 151